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类器官3D全景原位荧光试剂盒

类器官3D全景原位荧光试剂盒

Organoid 3D In Situ Fluorescence Staining Kit

本实验流程涵盖类器官 3D 培养系统的回收、固定、免疫标记、透明化、载玻片制备及显微成像,并适用于多种显微成像方式(共聚焦、双光子及光片显微成像)。本实验可用于研究类器官形态、细胞组成及细胞内过程,并适用于不同物种和器官来源的类器官系统,适合进行高分辨率 3D 成像分析。

规格
货号
NGH050001-kit
组成
类器官原位荧光缓冲液NGH050001-A125ml类器官原位荧光通透液NGH050001-B250ml类器官原位荧光封闭液NGH050001-C250ml类器官原位荧光清洗液NGH050001-D250ml类器官原位荧光3D透明化试剂NGH050001-E10ml类器官回收液NGH050001-F10ml
价格
999
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产品介绍

本实验流程涵盖类器官 3D 培养系统的回收、固定、免疫标记、透明化、载玻片制备及显微成像,并适用于多种显微成像方式(共聚焦、双光子及光片显微成像)。本实验可用于研究类器官形态、细胞组成及细胞内过程,并适用于不同物种和器官来源的类器官系统,适合进行高分辨率 3D 成像分析。

产品信息

组成货号规格(1kit保质期
类器官原位荧光缓冲液NGH050001-A125ml2~8℃,1Year
类器官原位荧光通透液NGH050001-B250ml2~8℃,2weeks,-20℃ for 1year
类器官原位荧光封闭液NGH050001-C250ml2~8℃,1Year
类器官原位荧光清洗液NGH050001-D250ml2~8℃,1Year
类器官原位荧光3D透明化试剂NGH050001-E10ml2~8℃,1Year
类器官回收液NGH050001-F10ml2~8℃,1Year
  • 类器官原位荧光缓冲液
    • 货号
      NGH050001-A
    • 规格 (1kit)
      125ml
    • 保质期
      2~8℃,1Year
  • 类器官原位荧光通透液
    • 货号
      NGH050001-B
    • 规格 (1kit)
      250ml
    • 保质期
      2~8℃,2weeks,-20℃ for 1year
  • 类器官原位荧光封闭液
    • 货号
      NGH050001-C
    • 规格 (1kit)
      250ml
    • 保质期
      2~8℃,1Year
  • 类器官原位荧光清洗液
    • 货号
      NGH050001-D
    • 规格 (1kit)
      250ml
    • 保质期
      2~8℃,1Year
  • 类器官原位荧光3D透明化试剂
    • 货号
      NGH050001-E
    • 规格 (1kit)
      10ml
    • 保质期
      2~8℃,1Year
  • 类器官回收液
    • 货号
      NGH050001-F
    • 规格 (1kit)
      10ml
    • 保质期
      2~8℃,1Year

操作步骤

一.类器官回收(0rganoid Recovery from 3D Matrix)

1.预防类器官粘附:用1%PBS-BSA 预包被移液枪头和离心管,避免类器官损失。2.去除培养基并清洗:吸去培养基,用1mlPBS轻柔清洗孔板,清洗完毕后将1ml

枪头减去头部吸取适量 PBS 冲打目标胶滴至完全脱落,移至EP管。残留部分加入适量冰冷的细胞回收液至基质胶完全溶解后,移至EP管,再用PBS清洗板孔。4°C低速离心。

解离 3D 基质: 加入 10倍基质胶体积的冰冷细胞回收溶液,4°C水平摇床 60rpm,孵育 1-2h,直至 3D 基质完全溶解。

去除基质残留:4°C低速离心3分钟,去除上清液。

注意事项:完全去除 3D基质对于后续免疫标记至关重要,残留的基质可能影响抗体渗透,导致染色不均匀或高背景信号。

二.固定、通透与封闭(Fixation and Blocking)

1.固定:用3ml 4% PFA 重悬类器官,并确保完整覆盖。在 4°C孵育 45 分钟固定,中途轻轻重悬一次以确保均匀固定。

2清洗:加入冷类器官原位荧光清洗液,4°C清洗2次,每次静置10分钟,4°C低速离心离心5分钟。

3.通透:重悬于 1ml 类器官原位荧光通透液透化,4°C轻摇30min。

4.封闭:加入 1ml 类器官原位荧光封闭液,轻柔混匀,4°C 轻摇 15 分钟。

三.免疫标记(Immunolabeling)

1.加入一抗:4°C过夜孵育(60 rpm 轻柔摇晃)。

2. 0WB洗涤:每孔加入适量类器官原位荧光缓冲液(0WB),轻摇洗涤2小时,4°C低速离心,去上清。重复 3 次。

3.加入荧光二抗:室温孵育 1h 或者4°c过夜孵育。-

4.洗涤:加入适量冷类器官原位荧光清洗液,4°C轻柔摇晃10min。重复洗涤2次。确保去除未结合的二抗。4°C,低速离心3min,去除上清。

注意:洗去游离荧光二抗,避免干扰

5. DAPI /PI 染色。

6.洗涤:加入适量冷类器官原位荧光清洗液,4°C轻柔摇晃10min。重复洗涤2次。

7.透明化处理:加入类器官原位荧光透化液(至少50ul),轻柔重悬,室温孵育20min,避免气泡形成。

8琼脂糖固定:透明化处理后加入与类器官原位荧光透化液等体积的4%低熔点的琼脂糖溶液混匀。(可选做)

9,载玻片制备:载玻片上贴上孔贴纸形成成像区域,防止样本扩散。(可以叠加 1-3 层,具体取决于类器官大小)。或者用凹载玻片。

10.转移类器官:剪去200uL 移液枪头的末端,取 20 L透明化后的类器官溶液,滴加孔贴纸圆孔区域(如果样木较大,可按每层孔贴纸 15uL的比例叠加多个层次)

11.覆盖盖玻片封片:孔贴纸两侧刷上两滴指甲油(薄薄少量)将盖玻片一侧先贴在上,然后缓慢放下另一侧,避免产生气泡。这样可以封闭样本,同时保证盖玻片不会压碎类器官。

12.等待样本均匀扩散:静置1分钟,让透明化溶液充分扩散到盖玻片下的空间。

13.成像:依据实验需求选择显微镜(共聚焦、双光子或光片显微镜)。设定合适的成像参数,进行 3D 成像。

14.数据分析:使用 Imaris、ImageJ 或 Arivis 进行图像处理。进行细胞分割、荧光信号定量分析。

四.注意事项:

确保透明化步骤充分进行,否则可能影响深层组织成像质量。

成像过程中避免光漂白,优化激光功率和曝光时间。

成像后尽快保存数据,进行后续分析。

免疫标记和样本转移过程中可能会有10-20%的类器官损失,建议温和移液并优化离心条件。

可暂停点:在 0WB(4℃)中可短期存放类器官(最多2天),但建议尽快进行透明化处理。

产品效果图

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